EFEITO DO ÁCIDO GLUTÂMICO NO TURNOVER DO 13C NO PÂNCREAS E FÍGADO DE SUÍNOS RECÉM-DESMAMADOS.

 

O período de desmame dentre as diversas fases na vida do suíno é considerada a mais crítica, devido à separação da mãe, inclusão social, adaptação ao novo ambiente e a mudança na alimentação, que como consequência do sistema digestivo do leitão ainda em desenvolvimento e somadas às mudanças ocorridas nesta fase, resultam em um baixo desempenho dos mesmos. Assim, vários aditivos vêm sendo utilizados com o objetivo de melhorar o estresse que os leitões são submetidos na fase pós-desmame, como ácido glutâmico, que é um aminoácido não-essencial, porém importante precursor de vias metabólicas. Jiang et al. (2009), observaram melhora no ganho de peso diário e na conversão alimentar de leitões, quando alimentados com dietas contendo glutamina e glutamato, indicando que esses aditivos podem desempenhar papel importante na manutenção da integridade intestinal, resultando em melhora nos processos de digestão e absorção de nutrientes. Em função dos problemas enfrentados pelos leitões ao desmame, objetivou no presente estudo verificar a influência do ácido glutâmico na troca isotópica do carbono no pâncreas e fígado em leitões recémdesmamados.

 

O experimento foi realizado no galpão experimental de creche da Universidade Estadual Paulista, Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia, Campus de Botucatu. Foram utilizados 63 leitões desmamados, de linhagem comercial, machos castrados e fêmeas, alojados em sala de creche. As baias eram compostas por piso parcialmente ripado e equipadas com comedouros, bebedouros tipo chupeta e campânula de aquecimento. A partir do desmame (idade média de 21 dias) até os 70 dias de idade, foram alimentados à vontade dentro do programa de alimentação por fases, de modo a atender as exigências nutricionais, de acordo com Rostagno et al. (2011). A principal fonte energética das rações foi à quirera de arroz, matéria prima oriunda de planta do ciclo fotossintético C3, para que apresentassem sinal isotópico de 13C distinto das dietas fornecidas às matrizes, cujas rações de gestação e de lactação possuíam como fonte energética principal o milho que é uma planta de ciclo fotossintético C4. O delineamento experimental foi o de blocos ao acaso, com dois tratamentos: Dietas sem glutamina (controle - DC) e Dietas contendo 1% de ácido glutâmico (DAG). Nos dias 1, 2, 4, 5, 7, 9, 13, 20, 27 e 49 após o desmame, foram abatidos, após insensibilização elétrica, três leitões por tratamento. No dia do desmame (dia zero) também foram abatidos três leitões, com o objetivo expressar a composição isotópica dos tecidos, que até então era função da ração fornecida às matrizes nas fases de gestação e de lactação. Para a realização das análises isotópicas dos órgãos, as amostras foram previamente processadas através de secagem em estufa e moagem em moinho criogênico. A meia-vida e o tempo total (T) de substituição do 13C nos órgãos foram calculados através das equações: T = (-1/k) ln(1-F), onde: T = tempo em dias para haver 50 ou 95% de substituição dos átomos iniciais pelos finais; ln = logaritmo neperiano; F = valor de átomos trocados, que pode variar de zero a 0,95; k = constante de turnover expressa em dia-1, fornecendo uma ideia de “velocidade” no processo de troca dos isótopos estáveis nos tecidos (DUCATTI, 2007). Os dados das analyses isotópicas foram analisados pelo método de equações exponenciais de primeira ordem do software Minitab®16.

 

Os resultados dos valores de meia-vida (T50%) e da substituição de 95% (T95%) do 13C no pâncreas e fígado dos leitões dos 21 aos 70 dias de idade, em função das dietas fornecidas depois do desmame, encontram-se na Tabela 1 e Figura 1 e 2.

 

Tabela 1 – Valores de meia-vida (T50%) e troca de 95% (T95%) dos isótopos estáveis do 13C do pâncreas e do fígado de leitões.

 

Os valores de meia vida e de 95% de substituição isotópica do 13C no pâncreas foram de 14,0 e 12,0 dias e 60,5 e 51,8 dias nos leitões que receberam dieta contendo dieta controle e ácido glutâmico, respectivamente (Tabela 1 e Figura 1), sendo considerados valores de rápida incorporação. No fígado a incorporação do 13C foi ainda mais rápida, sendo os valores de meia vida e de 95% de substituição isotópica do 13C foram de 8,0 e 7,1dias de 34,7 e 30,6 dias para os animais que receberam a dieta controle e com 1% de ácido glutâmico, respectivamente. O glutamato tem papel fundamental no metabolismo de renovação de células, logo, desencadeia maiores respostas em tecidos animais de rápido turnover, (Van BUREN e FREDERICK et al. 2007; RHOADS e WU, 2009), ou seja, para animais em estado catabólico, como ocorre com leitões recém-desmamados, esses aditivos podem se tornar importantes componentes dietéticos para a manutenção e regeneração dos órgãos (FOX et al., 1988 e CARVER, 1999). Segundo Zuanon et al (2006) o turnover depende do crescimento animal e de outros fatores, como os ambientais, nutricionais e sanitários, sendo que esta estimativa apresenta valores distintos para um mesmo tecido, em diferentes fases da vida do animal, pois a taxa de crescimento varia de acordo com a idade.

 

A suplementação com o ácido glutâmico acelerou a incorporação do 13C nos órgãos estudados, justificando sua importância metabólica. A técnica de estudo com diluição isotópica do 13C nos órgãos, possibilita demonstrar as ações tróficas do aditivo nos órgãos.

 

1. CARVER, J. D. Dietary nucleotides: effects on the immune and gastrointestinal systems. Acta Pediatric Supplement, Florida, v. 430, p. 83-88, 1999.

2. DUCATTI, C. Isótopos estáveis ambientais. Botucatu: Universidade Estadual Paulista, 2007. 204 p. Apostila.

3. FOX, A. D.; KRIPKE, S. A.; BERMAN, J. M. Dexamethasone administration induces increased glutamine specific activity in the jejunum and colon. The American Journal of Surgery, Philadelphia, v. 44. p. 391-396, 1988.

4. JIANG, Z. Y. et al. Effects of dietary glycyl-glutamine on growth performance, small intestinal integrity, and immune responses of weaning piglets challenged with lipopolysaccharide. Journal of Animal Science, Savoy, v. 87, p. 4050–4056, 2009.

5. RHOADS, J. M.; WU, G. Glutamine, arginine, and leucine signaling in the intestine. Amino Acids, v. 37 p. 111–122, 2009.

6. ROSTAGNO, H. S. et al. Tabelas Brasileiras para Aves e Suínos: composição dos alimentos e exigências nutricionais. 3. ed., Viçosa: UFV, 2011, 252p.

7. VAN BUREN, C. T.; FREDERICK, R. Dietary Nucleotides: A Conditional Requirement. Nutrition, New York, v. 13, n. 5, p. 470-472, 2007.

8. ZUANON, J. A. S. et al. Muscle _13C change in Nile Tilapia (Oreochromis niloticus): effects of growth and carbon turnover. Comparative Biochemistry and Physiology, Philadelphia, v. 145, p. 101-107, 2006.