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A importância da compatibilidade de um probiótico com agentes anticoccidianos

Publicado: 19 de julho de 2021
Por: Vinicius de Queiroz Teixeira, Gerente de Serviços Técnicos da Evonik
Introdução
A coccidiose aviária, causada por espécies do gênero Eimeria, é uma das doenças infecciosas de maior importância econômica na avicultura industrial, apesar da disponibilidade de fármacos anticoccidianos presentes no mercado (Berchieri e Macari, 2000).
O processo infeccioso é rápido, de 4 a 7 dias e caracteriza-se pela multiplicação do parasita nas células do epitélio intestinais do hospedeiro, causando danos significativos à mucosa intestinal. Essas lesões podem ocorrer em diversos segmentos do intestino, conforme a espécie que esteja ocorrendo.
Algumas medidas de manejo são utilizadas para minimizar o grau de contaminação do ambiente com esses protozoários mas não são suficientes para prevenir a infecção por esses agentes. Por isso os anticoccidianos são administrados via ração para prevenir a doença e as perdas econômicas causadas por ela.
Os anticoccidianos devem ser utilizados de forma profilática, pois antes que os sintomas ou perdas de desempenho sejam evidentes, o epitélio intestinal já terá sofrido importantes lesões. Adicionalmente, o tratamento de uma infecção em curso não interrompe totalmente o surto. Desta forma, a adição de anticoccidianos na ração de frangos de corte é uma prática comum (Allen et al., 2002; Greif et al., 2001).
De uma forma geral, probióticos são utilizados na avicultura pois podem trazer benefícios ao desempenho produtivo das aves como a melhora da conversão alimentar, redução da mortalidade, estímulo ao sistema imune e proteção do hospedeiro contra patógenos entéricos (Siragusa, 2012). Sabemos que alguns dos anticoccidianos que utilizamos na produção avícola possuem efeitos antibacterianos e com isso teriam ação também sobre os probióticos adicionados às dietas. Desta forma é fundamental a confirmação da compatibilidade dos probióticos com os agentes anticoccidianos antes de adicioná-los às rações.
Objetivo
Validar a compatibilidade do Bacillus amyloliquefaciens CECT 5940, Ecobiol®, com uma série de anticoccidianos comumente utilizados na avicultura, como monensina sódica, diclazuril, nicarbazina, cloridrato de robenidina, salinomicina sódica, lasalocida sódica, associação de narasina com nicarbazina, maduramicina, decoquinato e semduramicina sódica.
Materiais e métodos
Para essa validação dois tipos de avaliações foram realizadas, testes in vitro e in vivo.
A compatibilidade com a monensina sódica, diclazuril e nicarbazina foram estudadas por meio do ensaio de Concentração Inibitória Mínima (MIC), teste in vitro. Nesta técnica determina-se a menor concentração de uma molécula que inibe o crescimento da bactéria em estudo. Seguimos a recomendação da Autoridade Europeia para Segurança dos Alimentos, EFSA, para a determinação da compatibilidade de um probiótico com moléculas, onde a cepa avaliada deve resistir a pelo menos quatro vezes a dose máxima de bula do fármaco em estudo.
A compatibilidade com robenidina, salinomicina, lasalocida, diclazuril, associação de narasina com nicarbazina, monensina, maduramicina, decoquinato e semduramicina foi avaliada in vivo, com a recuperação do Ecobiol® em conteúdo cecal de aves alimentadas com as diversas moléculas administradas nas rações das aves em sua dose máxima de bula.
Ambos os ensaios, in vitro e in vivo, foram realizados de acordo com as metodologias indicadas no manual técnico de “Compatibilidade de aditivos zootécnicos microbianos com outros aditivos que apresentam atividade antimicrobiana” da EFSA-FEEDDAP.
Experimento In Vitro
O inóculo foi preparado a partir de colônias isoladas do Ecobiol®, a fim de se obter uma diluição de 1,0x108 UFC/ml.
Todos os anticoccidianos foram preparados de acordo com as recomendações dos fabricantes e foram feitas as diluições necessárias para o atendimento da compatibilidade do probiótico com as moléculas em estudo de acordo com a determinação da EFSA, conforme tabela 1.
A MIC foi calculada como a média de três repetições da mesma concentração de cada um dos anticoccidianos. O Ecobiol® foi considerado compatível com a molécula quando a MIC da molécula foi quatro vezes maior que sua concentração máxima na ração.
Experimentos In Vivo
Foram realizados dois experimentos para avaliar a compatibilidade do Ecobiol® com anticoccidianos em frangos de corte até os 21 dias de idade. Em ambos os experimentos os anticoccidianos foram incluídos na ração na dose máxima recomendada e confirmadas por análises químicas. As dietas basais possuíam níveis usuais da indústria e sua composição base era milho, trigo e farelo de soja. O Ecobiol® foi incluído em uma dose padrão de 1,0x109 UFC/kg de ração, também confirmado por análise de recuperação de esporos viáveis. No final dos experimentos foram coletados conteúdo cecal de 18 aves por tratamento e foi realizada a contagem de B. amyloliquefaciens CECT 5940 viáveis.
Resultados
No experimento in vitro houve crescimento do Ecobiol® em todas as concentrações testadas. Portanto, os resultados indicam que o Ecobiol® é compatível com os anticoccidianos monensina sódica, diclazuril e nicarbazina.
Nos experimentos in vivo, tanto na avaliação 1 (tabela 2) e na avaliação 2 (tabela 3), a saúde das aves e o desempenho foram considerados normais durante o estudo e não foram detectadas diferenças significativas entre os tratamentos, exceto no tratamento com maduramicina, que teve impacto negativo no peso corporal e no ganho de peso final do teste (34,7 vs. 32,1 g/d; P<0,05). Em ambos os testes a contagem de Ecobiol® foi adequada para todos os tratamentos, diferindo em aproximadamente ± 0,5 log UFC/g digesta. No experimento 1, mesmo com diferenças estatísticas observadas, todos os tratamentos não diferiram do controle e atenderam a recuperação necessária.
Conclusões
Baseado em todas as avaliações realizadas foi possível concluir que o Ecobiol® é compatível com todos os anticoccidianos comerciais testados
  • Allen P.C. and R.H. Fettered. 2002. Recent advances in biology and immunobiology of Eimeria sopecies abd inb diagnosis and control of infection with these coccidian parasites of poultry. Clin Microbiol Rev. 15(1):58-65.
  • Bercheri Junior A and Macari M. 2000. Doenças das aves. FACTA. (7.1) 391:405.
  • Greif G., Harder A. and A. Haberkorn. 2001. Chemotherapeutic approaches to protozoa: Coccidiae-current level of knowledge and outlook. Parasitol Res.87(11):973-5.
  • Siragusa G. R. 2012. Modern probiology- Direct fed microbials and the avian gut microbiota. Proceedings of the Australian Poultry Science Symposium. 23. 120:133.
  • Technical guidance - Compatibility of zootechnical microbial additives with other additives showing antimicrobial activity. The EFSA Journal (2008) 658, 1-5 DOI: 10.2903/j.efsa.2008.658.
ANEXOS
A importância da compatibilidade de um probiótico com agentes anticoccidianos - Image 1
A importância da compatibilidade de um probiótico com agentes anticoccidianos - Image 2
A importância da compatibilidade de um probiótico com agentes anticoccidianos - Image 3
  • Allen P.C. and R.H. Fettered. 2002. Recent advances in biology and immunobiology of Eimeria sopecies abd inb diagnosis and control of infection with these coccidian parasites of poultry. Clin Microbiol Rev. 15(1):58-65.
  • Bercheri Junior A and Macari M. 2000. Doenças das aves. FACTA. (7.1) 391:405.
  • Greif G., Harder A. and A. Haberkorn. 2001. Chemotherapeutic approaches to protozoa: Coccidiae-current level of knowledge and outlook. Parasitol Res.87(11):973-5.
  • Siragusa G. R. 2012. Modern probiology- Direct fed microbials and the avian gut microbiota. Proceedings of the Australian Poultry Science Symposium. 23. 120:133.
  • Technical guidance - Compatibility of zootechnical microbial additives with other additives showing antimicrobial activity. The EFSA Journal (2008) 658, 1-5 DOI: 10.2903/j.efsa.2008.658.
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Autores:
Vinícius Teixeira
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