Mucosa Jejuno Sorgo Ração Frangos

Introdução: Milho e sorgo sem tanino são similares no valor nutricional e no efeito sobre o desempenho dos frangos de corte. No entanto, na prática há receio pelo uso de sorgo, principalmente, da inclusão na dieta pré-inicial (CAMPOS, 2006). Em rações calculadas a custo mínimo, o milho não é completamente substituído pelo sorgo e o nível prático de inclusão do sorgo é limitado a 30% (ROSTAGNO et al., 2005), em parte devido aos efeitos adversos sobre a pigmentação da pele e carne dos frangos, ao menor teor de lisina, metionina e treonina, menor digestibilidade de proteína e à presença de taninos. Os efeitos dos taninos são dose-dependentes, altas doses produzem necrose ou efeitos benéficos por doses controladas como a ativação do GALT, e formação de camada fina de complexos tanino-proteína insolúveis protetora da mucosa (MITJAVILA, et al., 1977; JAMROZ et al., 2009). O objetivo deste trabalho foi avaliar o efeito da substituição do milho da ração pelo sorgo sem tanino (Sorgum bicolor L. Moench) na função da mucosa do jejuno em frangos de corte.

Material e Métodos: Foram utilizados 72 pintos de um dia machos, Cobb-500, distribuídos ao acaso em quatro tratamentos (0, 50, 75 ou 100% de substituição do milho pelo sorgo). As rações experimentais foram isonutrientes e isoenergéticas dentro de cada fase de criação: inicial (1-21 dias) e crescimento (22-42 dias) e formularam-se seguindo os níveis nutricionais indicados por ROSTAGNO et al. (2005). No 42º dia, seis frangos por tratamento foram abatidos e amostras do jejuno foram coletadas para a determinação do grau de perda epitelial dos vilos por microscopia eletrônica de varredura (GOMIDE Jr et.al., 2004), o índice mitótico nas criptas por técnica imunohistoquímica para detecção de Antígeno Nuclear de Proliferação Celular-PCNA (UNI et al., 1998) e a atividade específica da enzima de membrana aminopeptidase (RUEDA et. al., 2007) e maltase (DAHLQVIST, 1964). Os dados foram submetidos à análise de variância (5%), usando o procedimento GLM do SAS 9.0. Quando as diferenças foram significativas, os graus de liberdade de tratamentos foram desdobrados em efeito linear, quadrático e cúbico.

Resultados e Discussão Os frangos apresentaram maior grau de perda epitelial quando alimentados com rações contendo 100% de substituição e maior índice mitótico quando da substituição de 75 ou 100%, (efeito linear e cúbico - p<0,05). Houve efeito linear sobre a atividade da aminopeptidase (p<0,05), sendo menor em frangos alimentados com 75 ou 100% de substituição. Houve efeito linear e cúbico (p<0,05), sobre a atividade da maltase, sendo os menores valores médios observados nos frangos alimentados com rações contendo 75 ou 100% de substituição. A menor atividade das enzimas pode ser em parte explicada pela maior perda do epitélio. As enzimas digestivas encontram-se ancoradas à borda em escova da superfície dos vilos, sendo sintetizadas como precursores inativos por enterócitos da cripta ou da união cripta-vilos e, a atividade é adquirida nos enterócitos progredindo ao longo do vilo, apresentando-se a máxima atividade na parte média dos vilos. Adicionalmente, a atividade específica é proporcional a área de superfície epitelial (IJI et al., 2001). Os anteriores resultados podem indicar que tenha acontecido: 1) alteração do turnover celular com marcada perda epitelial não compensada pelo aumento do índice mitótico, que levou à diminuição da atividade das enzimas de membrana; 2) aparente desvio do uso de energia e nutrientes para o reparo da mucosa e, 3) possível alteração das funções de digestão e absorção do intestino delgado.

Tabela 1. Média ± erro padrão e resultados da análise de variância (5%) do grau de perda do epitélio intestinal (integridade), do índice mitótico, e da atividade específica das enzimas de membrana aminopeptidase e maltase na mucosa do jejuno de frangos de corte, de 42 dias, alimentados com rações contendo diferentes porcentagens de substituição de milho pelo sorgo no período total de criação (1 a 42 dias).

Conclusão O uso de rações com substituição de 75 ou 100% do milho pelo sorgo até os 42 dias, prejudica a estrutura das vilosidades com alteração do turnover celular demonstrado pela marcada perda epitelial não compensada pelo maior índice mitótico e diminuição da atividade das enzimas de membrana aminopeptidase e maltase.

Agradecimento À CAPES pela bolsa de doutorado PEC-PG concedida à primeira autora.

Referências Bibliográficas CAMPOS, D.M.B. Efeito do sorgo sobre o desempenho zootécnico, características da carcaça e o desenvolvimento da mucosa intestinal de frangos. Dissertação FCAV/UNESP, Jaboticabal, 2006. DAHLQVIST, A. Method assay intestinal disaccharidases. Analytical Biochemistry, 7:18-25, 1964. GOMIDE Jr., M.H.; STERZO, E.V.; MACARI, M. et. al. Use of scanning electron microscopy for the evaluation of intestinal epithelium integrity. Revista Brasileira de Zootecnia, v33p.1500-1505, 2004. IJI, P.A.; SAKI, A.; TIVEY, D. Body and intestinal growth broiler chicks on commercial starter diet. Development and characteristics of intestinal enzymes British Poultry Science, 42, p.514–522, 2001. JAMROZ, D.; WILICZKIEWICZ, A.; SKORUPINSKA, J.; et al. Effect of sweet chestnut tannin (SCT) on the performance, microbial status of intestine and histological characteristics of intestine wall in chickens. British Poultry Science v. 50, n. 6, p. 687-699, 2009. MITJAVILA, S., LACOMBE, C., CARRERA, et. al. Tannic acid and oxidized tannic acid on the functional state of rat intestinal epithelium. Journal of Nutrition. v.107, 2113-2121. 1977. ROSTAGNO H.S.; ALBINO, L.F.T; DONZELE, et. al. Tabelas brasileiras para aves e suínos. Composição de alimentos e exigências nutricionais. 2ªEdição. Ed: Rostagno H.S. Viçosa-MG, 2005. RUEDA, E.; LEÓN, M.; CASTAÑEDA, M.; et. al. Effects of Concanavalin A on intestinal brush border enzyme activity in broiler chickens. British Poultry Science, v.48, n.6, p. 696-702, 2007. UNI, Z; PLATIN, R; SKLAN D. Cell proliferation in chicken intestinal epithelium occurs both in the crypt and along the villus. Journal of Comparative Physiology B v. 168, p. 241-247, 1998.